2. “Una valoración hematológica no esta completa sin una correcta valoración
citomorfológica de el extendido de sangre periférica, que a pesar de los
avances tecnológicos continúa siendo la “prueba reina” en el diagnóstico de las
enfermedades hematológicas.”
G.C. Hematólogo Colombiano
3. Valoración del estado
hematológico del
paciente.
Nos permite valorar y
comparar los
resultados del
hematoanalizador.
5. Celularidad y morfología
▪ Tinción, tamaño, relación con otras
células, cantidad, composición y signos de displasia
▪ Presencia de Blastos
Células extrañas
▪ Metástasis
▪ Microorganismos
▪ Células óseas o tisulares
Artefactos
▪ Restos celulares
▪ Artefactos del colorante
7. Con la
automatización del
laboratorio clínico el
FSP, que a pasado a
no hacerse en
muchos laboratorios
clínicos, sobre todo
en aquellos con
sobrecarga de
trabajo o “fabricas
de exámenes”.
8. Algunos laboratorios
reportan tal y como
sale de la
maquina, en muchos
casos en inglés y
unidades que no se
utilizan, sin la mas
mínima revisión del
análisis
microscópico.
Aunque el reporte te
pida el análisis
manual.
9. El ejemplo mas clásico es
el conteo de Neutrófilos
en Banda y
Segmentados, la mayoría
de los analizadores, no
discriminan entre estas
dos fases del
neutrófilo, por lo que se
requiere de una valoración
en el FSP.
Otro ejemplo es que
algunos analizadores no
nos determinan
eosinófilos y que hablar de
los basófilos.
¿Mas fácil que un EKG verdad?, lamentablemente son
pocos los médicos ( e incluso químicos o técnicos) que
interpretan los histogramas, por lo que dependen de un
recuento manual, en caso de que el equipo no nos
arroje, bandas, eosinófilos o basófilos.
10. La solución se deduce en informes del hemograma, de los cuales no es posible
tener un buen estudio de sangre periférica, olvidando que “los contadores de
células son excelentes pero no perfectos” y en ningún momento pueden
reemplazar a un detenido y cuidadoso estudio de un extendido de sangre
periférica.
11. “La calidad de un resultado de laboratorio depende de la calidad de la muestra”
(premisa básica de las buenas prácticas de laboratorio)
El método del portaobjeto, también conocido como método de doble portaobjeto es
el más utilizado universalmente para hacer los extendidos de sangre periférica.
Para lograr un extendido de sangre periférica por este método es importante tener
en cuenta la muestra, el material utilizado y el procedimiento propiamente dicho.
12. 1. Tomar dos portaobjetos nuevos y
limpios, no tomar con las manos
directamente, siempre con
guantes, de preferencia limpiarlos
previamente con alcohol y secar.
2. Colocar el portaobjeto en donde se
planea hacer el extendido sobre una
superficie plana.
3. Mezclar la muestra de sangre unos 2
minutos en el homogeneizador o 10
inmersiones manuales.
4. Marcar el portaobjetos con un lápiz
apropiado. La identificación debe ser
en el extremo grueso (o el
esmerilado) del portaobjetos.
5. Colocar una pequeña gota de
aproximadamente 7µL, a 1 cm de un
extremo del portaobjetos.
Muestra es sangre venosa
recién extraída o con menos
de 2 horas de haber sido
extraída.
13. 6. Con el pulgar y el índice de la mano
derecha sujetar el segundo
portaobjetos, también conocido
como portaobjetos extensor, contra
la superficie del primer portaobjeto
con un ángulo de 30° a 45°.
7. Deslizar el portaobjetos de empuje
hacia atrás, hacia la gota de sangre.
Permitir que la gota se extienda
hasta tres cuartas partes del bisel
del portaobjetos de empuje y hasta
los bordes del portaobjetos
extensor.
8. Empujar rápidamente el
portaobjetos extensor hacia delante
(lejos de la gota), este movimiento
debe ser suave y continuo hasta el
extremo del portaobjetos.
9. Permitir que el extendido se seque
al aire antes de colorearlo, de
preferencia no abanicar.
14. Se fundamenta en el
principio de interacción
colorante – carga
eléctrica – célula
(núcleo, granulo o
citoplasma).
Se utiliza una solución de
Wright y un Buffer.
1. Agregar colorante de Wright
con un gotero, cubriendo todo
el frotis por 1 - 3 minutos.
2. Se agrega el buffer por 1 a 2
minutos, se espera a que
aparezca una “nata verde
metálica”
3. Se leva con agua corriente.
4. Secar y Observar.
15. Se utilizan los
colorantes por
separado y es la mas
utilizada.
Se usa un fijador
(Metanol), un
colorante acido
(Eosina) y un
colorante Básico
(Azul de Policromo)
y entre colorantes se
usa agua para
limpiar excesos.
1. Fijar 30 s en Metanol
2. Secar
3. Teñir 30 s en Eosina
4. Lavar y Secar
5. Teñir 30 s en Policromo
6. Lavar y Secar
7. Observar
16. No debe
parecerse a
ninguno de
estos
ejemplos.
Debe ser ¾
laminilla, clar
o, no muy
grueso ni
muy fino y
contener las
tres partes
del frotis.
17. El FSP contendrá Cabeza (Gruesa), Cuerpo, zona
de observación y una cola o barbas.
Siempre deberá ser de bajo (10x) a gran
aumento (100x) y en la zona de
observación, debido a que la distribución celular
es mejor en dicha zona.
21. Línea Celular Evaluar
Eritrocitos Color
Tamaño
Forma
Leucocitos Tamaño
Forma
Granulaciones
Lobulaciones
Relación núcleo / citoplasma
Plaquetas Tamaño
Forma
Agrupación
22. Se diferencian entre los leucocitos, contando 100
células, se realiza con ayuda de un piano o contador
celular.
23. A la observación del FSP, se encontró:
Serie roja sin alteraciones, eritrocitos normociticos, y
normocrómicos.
▪ *Puede haber Anisocitosis moderada con predominio de
microcitos Anisocitosis : microcitos +++
▪ Poiquilocitoisis marcada con predominio de ovalocitos
Poiquilocitosis: ovalocitos +++, estomatocitos ++
Serie blanca, sin alteraciones en cuanto a conteo
diferencial, tamaño, forma, granulaciones, lobulacion
es y relación núcelo / citoplasma
Plaquetas, normales en forma, tamaño y agrupación.
No se observan células extrañas o
microorganismos.
24.
25.
26. Anisocitosis:
Micro o macrocitosis (+/- VCM)
Alteraciones del color
Alterada la HCM
Alteraciones de la forma
Alterado el A.D.E.
27. MACROCITOS
Anemia megaloblástica, anemia
hemolítica, hepatopatías, hipotir
oidismo
MICROCITOS
Deficiencia de hierro, anemia
sideroblástica, talasemia, saturni
smo.
Variación anormal del tamaño de los
eritrocitos (diámetro normal 6 a 8 μ).
28. HIPOCROMÍA POLICROMASIA
Células pálidas, centro claro y
mayor a 2/3 del diámetro celular
(HCM < 28)
Deficiencia de
hierro, talasemia, anemia
sideroblástica, saturnismo, padeci
mientos crónicos
Células con diferentes
colores, debido a la presencia de
algunos reticulocitos.
Indica eritropoyesis
acelerada, como en hemorragias
y anemias hemolíticas.
29. NOMBRE FORMA DEFICIT O
PRODUCCIÓN
POR
PATOLOGÍAS
Dacriocito
Drepanocito
Drepanocito
hoja de vicero
Eliptocito
Queratocito
Nizocito
Lagrima –
Raqueta
Hoz – Media
Luna - Falciforme
Ovalocitos
Casco – Cuerno
Con más de dos
Concavidades
Eritropoyesis
Cambio a: a
Cadena B. de la
globina
Espectrina
Anormalidades en
la Circulación
Talasemias – A. Megaloblasticos
Anemia – Células Falciformes S – C
Anemia – Megaloblástica – Eliptocitosis
hereditaria hereditaria – Anemia por déficit de
hierro. Talasemia
CID – AH – Glomerulonefritis
Transtornos donde hay esferocitos
POIQUILOCITOSIS
30. NOMBRE FORMA DEFICIT O
PRODUCCIÓN
POR
PATOLOGÍAS
Equinocito
(erizo)
Estomatocito
(boca)
Esferocito
(redondo)
Esquistocito
Acantocito
Codocito
Célula Fresa
Cremada
Dentada
Célula Boca
Taza
Casquete hongo
Redonda
Fragmentos o
Cascos
Espuelas –
Espina
Espolones
Diana - Sombrero
Mexicano -
Campana
ATP asa
Bajo pH
Fármacos
Catiónicos
Espectrina
Anquirina
Daño mecánico
o Traumático
Alteración lípidos
Altos Lípidos
Enfermedad de hígado – Uremia– Quemaduras –
Cáncer estómago – Tto con Heparina –
Traumatismos
Estomatocitosis hereditaria – Cirrosis - Anemia
Rh nulos – Intoxicación por Etanol o Plomo
Esferocitosis hereditaria – AHA – Incomp. ABO –
Septicemia – EHRN
AH. Intravascular – Quemaduras externas – CID
– Uremia – Hemoglobinuria de la marcha
Cirrosis – Abetalipoproteinemia -
Posesplenectomia – Mala absorción de grasa
Hemoglobinapatias – Talasemias –
Esplenectomia – Enf. Renal – Anemia por deficit
de hierro y Vitamina B6 – Déficit LCAT.
32. Es un pequeño
residuo nuclear.
Consiste en un grumo
visible en el interior de los
hematíes y que se tiñe, de
un color que oscila entre el
rojo oscuro y el negro, con
los colorantes habituales.
Aparece en
sujetos esplenectomizados
y en algunas anemias.
33. Consiste en la existencia de
unos hematíes planos y con
una forma de sombrero
mexicano. Esto hace que los
hematíes, vistos
frontalmente, tengan un
reborde colorado, que
delimita una zona anular
pálida, cuyo centro también
está coloreado. Ello les
confiere una imagen en diana
y por eso, reciben el nombre
de dianocitos. Se produce en
la talasemia y en las
hepatopatías.
34. ANILLOS DE CABOT
Están formados por restos de la
membrana nuclear o de microtúbulos.
Se produce en la anemia
megaloblástica.Y se ha observado en
anemias hemoliticas
CUERPO DE PAPENHEIMER
También se llaman gránulos sideróticos.
Son acúmulos de hemosiderina unida a
proteínas. Consisten en gránulos basófilos.
Se producen en los enfermos
esplenectomizados y en las anemias
sideroacrésticas.
35. PILA DE MONEDAS
Característico en
fenómenos
autoinmunes, anemia
hemolítica autoinmune o
aglutininas frías.
Falsos Rouleux en
muestras viejas.
36. CRIOAGLUTININAS
Acúmulos o grumos de glóbulos
rojos con el más grande en el
centro de la figura.
Este agregado es típico de un
paciente con enfermedad por
crioaglutininas (Aglutinan a <37°)
37.
38. IZQUIERDA
Procesos Leucemoides o
Leucemias.
Aumento en las células
inmaduras circulantes.
DERECHA
Hipersegmentación
Anemias megaloblasticas
39. CUERPOS DE DÖHLE
Áreas teñidas de azul,
Anomalía de May- Hegglin
Curso de infecciones o tras el
tratamiento con fármacos
citostáticos.
HIPOSEGMENTACIÓN O
ANOMALÍA DE PELGER-HUET
Uso de farmacos
mielotoxicos, aparecen
granulos toxicos.
40. NUCLEOS CEREBRIFORMES O
EN SEZARY
Fungicemias, LM4-5.
BASTÓN DE AUER
Agrupaciones de gránulos primarios
anormales, que adoptan una forma de
agujas.
Se encuentran en el citoplasma de los
blastos de la leucemia mieloide aguda.
41. CUERPOS DE RUSSEL
Inclusiones redondeados producidas
por la acumulación de
inmunoglobulinas. Es un tipo celular
encontrado en el mieloma múltiple.
INCLUSIÓN DE IG
Inmunoglobulinas cristalizadas
en linfocitos, común en procesos
autoinmunes.
42. SOMBRAS DE GUMPRECHTY
TRICOCITOS
Leucemia Linfoide.
SG son restos nucleares
Tricoleucocito o linfocito piloso
LINFOCITO ATÍPICO O
REACTIVO
Linfocito activado por
proceso viral.
43. FAGOCITOSIS (AUTOINMUNEY
PATÓGENOS) CHIEDAK HIGASHI
Fallo en la formación de los
fagolisosomas en los
neutrófilos, lo que impide la
destrución de las bacterias
fagocitadas
46. Errores
Si alguna vez se habían
preguntado que pasaba
si dejaban un tubo con
EDTA sin procesar, y de
repente le hacían un
frotis, se darán cuenta
que encontraran una
gran cantidad de cosas
extrañas, que ya no
tienen significado
clínico, aunque si un
significado biológico:
Ciclo Celular.
Neutrófilo en Apoptosis
en un Frotis de Sangre
periférica de una
muestra con mas de dos
horas de toma.
Tinción deWright, 100x.
49. Precursor eritroide
Ligeramente mas
grande
Presenta restos de RNA
en su citoplasma.
Se tiñen con azul
brillante de cresilo.
2 – 7% del total de
eritrocitos
50. Valoración de la función eritropoyetica de la
medula ósea.
52. DISMINUYEN
Daños a la médula ósea
Aplasia congénita de la médula roja
Toxicidad u otros daños al hueso
Deficiencia de vitaminas y oligoelementos
deficiencia Vitamina B11 / ácido fólico
deficiencia de vitamina B12
▪ Anemia perniciosa
deficiencia de hierro
Tratamiento con citostáticos
tratamiento de cáncer
tratamiento de ciertas patologías del colágeno
Deficiencia de eritropoyetina
insuficiencia renal
caquexia
infecciones devastadoras, incluyendo SIDA
algunas enfermedades crónicas
anemia aplásica e hipoplástica
AUMENTAN
hemólisis
influencia de toxinas
razones inmunológicas
razones mecánicas - en su mayoría de
las válvulas artificiales de corazón
talasemia, esferocitosis congénita y otras
anemia hemolítica congénita
policitemia
hemorragias
ciertos tipos de cáncer
en pacientes con tumores productores de
eritropoyetina
pacientes con metástasis óseas
iatrogenia
medicamentos hematopoyéticos
esplenectomía
tratamiento con hierro, ácido
fólico, vitamina B12
53. 1. En un tubo agregar 2
gotas de sangre y 2
gotas de azul brillante
de cresilo.
2. Incubar a 37°C por 15
minutos
3. Realizar un frotis
sanguíneo
4. Observar al
microscopio
54. 1. Contar 1000 celular y
en ellas los
reticulocitos
2. Resultado se calcula:
55. Jaime Pérez, JC. (2012). Hematología: La sangre y sus
enfermedades. México: Editorial McGraw Hill
Freund M. (2011) Hematología, Guía práctica para el diagnóstico
microscópico. Barcelona: Editorial Medica Panamericana.
Almaguer C. Interpretación clínica de la biometría hemática.
Medicina Universitaria 2003; 5(18): 35-40.
Hurtado R, MelladoY, Flores G,Vargas, P. Semiología de la
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Campuzano G. ¿Cómo obtener un extendido de sangre periférica
de óptima calidad?. Medicina & Laboratorio 2007; 13(11-12):
2008, 14: 125-152.
Campuzano G. Del laboratorio clínico a la “fábrica de exámenes” y
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