3. Introducción
Desorden hematológico
Dx de primera instancia es la citometría hemática
Prueba mas rutinaria
Se buscan maneras mas rápidas, fáciles y sencillas de
llevarla acabo.
Por ello así hemos evolucionado desde las antiguas
cámaras de Neubauer y los tediosos conteos manuales,
hasta la modernidad de equipos de impedancia eléctrica
y citometria de flujo.
4. El estudio del paciente hematológico
Alteraciones en
elementos formes
Alteraciones a nivel
plasmático
Citometría Hemática
Frotis de sangre
periférica
Reticulocitos
VSG
Tiempos de
coagulación
Factores del
complemento
Determinación de
anticuerpos
COOMBS
8. Siglo XIX,
Primeros
Conteos
manuales
1952 Los
Coulter
inventan
el Coulter
Counter
A
53, Parker y
Host utilizan
el principio
de
Dispersión
Óptica,
tiñendo a
los G.r. y a
los G.b de
rojo y azul.
1960
Inicia
la
CMF
Actualidad, modernos
equipos
automatizados,
algunos de CMF
realizan
INMUNOTIPIFICACIO
N
10. Coulter Counter Model A
Realizaba los conteos sanguíneos sin diferencial, en 10
minutos pero no daba diferencial, por lo que los mejoro para
crear toda la serie Coulter Counter Model .
16. Principios de los contadores
automatizados
Los equipos automatizados para recuentos celulares
han sido elaborados teniendo en cuenta algunas
propiedades de las células:
17. Principios
Son malas
conductoras de la
electricidad, por lo
que aumentan la
Resistencia Eléctrica.
Tienen variedad de
tamaños.
Tienen una densidad
caracterizarle y
diferente para cada
una.
Cada una refracta la luz
con una intensidad
diferente.
Tienen composición
citoquímica diferente.
La relación núcleo –
citoplasma es diferente
para cada célula.
18. Principio de Coulter
Si el orificio es atravesado solamente por líquido diluyente, la resistencia
eléctrica medida por los electrodos es mínima y constante, pero cuando el
orificio es atravesado por una célula sanguínea, se produce un aumento de la
resistencia eléctrica y un cambio de potencial entre los electrodos.
23. ERRORES
El error de
coincidencia se
presenta cuando
la apertura
coinciden dos
células o más y
son contadas
como una sola;
en este caso se
disminuye el
recuento total y
se aumenta el
volumen
corpuscular de
las células en la
dilución.
28. Formula blanca
Al realizar esta medición en 5.000-10.000
leucocitos se determina el diferencial y si
existe la presencia de células anómalas.
29. DISPERSIÓN ÓPTICA
Cada célula posee diferente volumen,
morfología e índice de refracción
Célula
Láser
Detector de ángulo amplio
Detector de
ángulo cerrado
Angulo 0
33. ventajas
RECUENTOS MANUALES RECUENTOS AUTOMATIZADOS
75 a 85% de fiabilidad 95 A 98% de fiabilidad, repite la prueba 3
veces para comprobar
Técnicas ya conocidas Rapidez
Reactivo más barato Menos gasto de reactivo
Frotis y evaluación citomorfológica
sanguínea
Histograma
34. desventajas
RECUENTO MANUAL RECUENTO AUTOMATIZADO
Muy comunes los errores humanos Ciertos parámetros se calculan a partir del
despeje matemático de fórmulas, lo que
ocasiona que algunos datos sean errados
Aproximadamente el proceso dura entre
45 minutos a 1 hora y media
Diferencial poco confiable, tanto de
plaquetas como de leucocitos, en su
morfología
Laborioso proceso Costos
36. Histograma
Son gráficas de frecuencias de
volúmenes celulares.
Eje X representa el volumen
celular en fL.
El eje Y; por ser relativo, no tiene
un equivalente numérico real.
37. Histogramas eritrocitarios
La curva normal de glóbulos rojos es cónica, modal y se encuentra
representada en Tamaños de 60 a 110 FL, con un pico o curva
secundaria modal de plana a ligeramente cóncava con muy poca
altura que llega a 200 FL.
39. Desviaciones
Curva desplazada a la izquierda
Células con un registro menor a 60 fL
Se observa en microcitosis, poiquilocìtosis,
esquistocitos, leptocitos, dacriocitos,
drepanocitos.
Curva desplazada a la derecha
Células con mas de 95 fL
Se observa en macrocitosis, ovalocitos,
eliptocitos, normoblastos y parásitos hemáticos
41. CURVA BIMODAL
Se presenta cuando existen dos poblaciones celulares, cada
una hace su media y se interceptan en las coincidencias de
tamaños.
42. ADE AUMENTADO
Se observan en diferentes casos de anisocitosis e implican un
registro de pulsos con una dispersión en tamaños muy grandes,
en algunos casos incluyendo pulsos menores de 30 fL que no
quedan registrados en el histograma de rojos sino en el de
43. Arranque extenso en Y
El recuento de plaquetas y de glóbulos rojos se
realiza en la misma dilución y que luego los pulsos
registrados son discriminados únicamente por
tamaño, dejando para el histograma y recuento de
rojos los pulsos de tamaño superior a 30 FL, y los de
tamaño inferior quedan registrados como plaquetas.
Se presenta cuando hay microcitosis, o
esquistocitos, drepanocitos y leptocitos, son
contados como plaquetas aumentando su recuento
y disminuyendo el de rojos.
44. Arranque extenso en Y
Se presenta en trombocitosis o
macrotrombocitosis o hay presencia de
45. Reticulocitos
El equipo los tiñe supra vitalmente y así creando un precipitado
de azul nuevo de metileno y la maquina lo detecta por medio
de sus detectores ópticos.
51. HISTOGRAMA LEUCOCITARIO
Los glóbulos blancos se agrupan en tres curvas claramente definidas y estas configuran
la arquitectura normal.
• Curva de linfocitos cóncava 50-100 fL
• Curva de mononucleares plana a cóncava 100- 150 fL.
• Curva de granulocitos cóncava 150-380 fl
52. HISTOGRAMA DE LEUCOCITOS
Recuento total de Leucocitos
90 160
Linfocitos
MO – MID = Eosinófilo, Basófilo, Monocito
MO o MID
Granulocitos
Neutrófilos
EJEMPLO DE ANALISIS
DISTRIBUCIÓN NORMAL
WBC 8.3
LY # 2.5
MO # .8
GR # 5.1
50 100 300200 400WBC
REL
NIo.
66. Bloques
Los bloques en la distribución del histograma se presenta cuando el número
de
células está disminuido (-1000) y se hace necesario aumentar los intervalos
69. dispersograma
Gráfico que representa la distribución de dos variables en una población de muestra.
Una variable se representa gráficamente en el eje vertical; la otra en el horizontal.
Un dispersograma demuestra el grado o tendencia de presentación de las variables en
relación mutua.
71. cuadrantes
Cuadrante 1: Tenemos en este grupo núcleos de
normoblastos, agregados plaquetarios,
macroplaquetas, forma adultas de plasmodium,
sombras nucleares y células de difícil hemólisis como
drepanocitos.
Cuadrante 2: Normalmente se ubican los linfocitos en
la región central derecha, la aparición de células en la
región superior e inferior derecha hacen sospechar
lapresencia de linfocitos atípicos. En la zona superior
central se sospecha la presencia de blastos.
Cuadrante 3: Encontramos el registro de monocitos
hacia la región central derecha, la presencia de
células en la región central superior hace sospechar
la presencia de blastos.
72. cuadrantes
Cuadrante 4: Se ubican en la zona central el registro normal de
neutrófilos; la aparición de células inmaduras de esta línea celular se
registra en la región superior de dicho cuadrante; la presencia de
neutrófilos de registro pequeños y los macropolicitos, se da en la
parte inferior del mismo cuadrante.
Cuadrante 5: normalmente no presenta células, cuando allí por
alguna razón se encuentran células estas pueden relacionarse con
células dañadas de sangre envejecida.
Cuadrante 6: En la región central de este cuadrante podemos
encintrar el registro deeosinòfilos, así mismo por la densidad de los
puntos registrados podemos sospechar el aumento de este tipo de
células
82. Bibliografía
Fundamentos de Hematología, Dr. Guillermo Ruiz Arguelles.
Diagnóstico y Tratamiento Clínicos por el laboratorio, John
Bernard Henry.
Hematología: La sangre y sus enfermedades, Dr. José Carlos
Jaime Pérez.
Hemograma, Como hacer e interpretar, Dr. Raimundo Antonio
Gomes Oliveira.
Hematología, Guía práctica para el diagnóstico microscópico, Dr.
Mathias Freund.
Artículo de revisión, Semiología de la Citometría hemática,
Revista de la facultad de medicina UNAM, Dr. Rafael Hurtado
Monroy.
