Algas marinas invasoras_galicia

Xunta de Galicia, Consellería de Medio Ambiente e Desenvolvemento Sostible

RECOÑECEMENTO DE ESPECIES INVASORAS EN GALICIA
E INTRODUCCIÓN A SÚA PROBLEMÁTICA:

MEDIO MARIÑO, FLORA

Ignacio Bárbara, 2009
Universidad de A Coruña

Xunta de Galicia, Consellería de Medio Ambiente e Desenvolve mento Sostible Especies invasoras en Galicia: Medio Mariño, Flora Ignacio Bárbara 2009

RECOÑECEMENTO DE ESPECIES INVASORAS EN GALICIA E INTRODUCCIÓN A SÚA
RECOÑ INTRODUCCIÓ SÚ
PROBLEMÁTICA: MEDIO MARIÑO, FLORA
PROBLEMÁ MARIÑ

• Introducción
•Medio Marino y Algas
•Conceptos de Biogeografía Marina

• Algas bentónicas marinas invasoras en Galicia

• Resumen y conclusiones

• Bibliografía


MEDIO MARINO Y ALGAS

•Estable y homogéneo, con gran inercia térmica. Predominan cloruros e
iones conservativos Na>Mg>Ca>K
•Facilidad para dispersión de organismos y esporas. Rápida expansión de
especies alóctonas.
•Nutrición algas por difusión de la superficie de la lámina (no raíces, tallos
y hojas). Sustrato limitado para organismos bentónicos. Gran competencia
por el sustraro y los nutrientes.
•Estratificación de flora en función de la profundidad. Absorción de
energía lumínica en intensidad y calidad acorde a la profundidad.
Pigmentos fotosintéticos de algas (pardas, rojas y verdes).
•Zonación en función del régimen de mareas.
•Estrategias de vida de las algas
Grupos morfo-funcionales y adaptaciones al medio
Gametófito vs Esporófito
Alternancia de generaciones y ciclos biológicos

MEDIO MARINO Curso Doctorado, Macroalgas marinas de Galicia, Ignacio Bárbara, 2009


Zonación intermareal de las macroalgas marinas


Estrategias de vida Laminar fino

Laminar grueso

MEDIO MARINO Curso Doctorado, Macroalgas marinas de Galicia, Ignacio Bárbara, 2009

Estrategias de vida

Filiforme

Costroso


Estrategias de vida

ul os
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Pr
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síc
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Estrategias de vida
Ciclo
monogenético
(Codium)
ito
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G am


Estrategias de vida
Ciclo
Digenético óf ito
m et
Isomórfico G a
(Ulva)

óf ito
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Es


Estrategias de vida
metófito
Ciclo G a
Digenético
Heteromórfico
(Laminaria)

óf ito
p or
Es


COCEPTOS DE BIOGEOGRAFÍA MARINA

•Temperatura importante ya que dentro de unos límites máximos y mínimos
la especie debe ser capaz de sobrevivir (límite vegetativo) y completar su
ciclo vital (límite reproductivo). A nivel mundial se utilizan las isotermas,
línea teórica que se ajusta en buena medida a los límites biogeográficos.
•Latitud: en estrecha relación con la intensidad luminosa, la duración de la
luz a lo largo del año (limitante en latitudes septentrionales) y la
temperatura.
•Corrientes pueden provocan irregularidades en los límites teóricos al
desplazar masas de distinta temperatura. Pueden ser vías de migración para
muchas especies.
•Barreras biogeográficas como las costas arenosas de Carolina, Istmo de
Panamá, desembocaduras de grandes ríos han producido aislamiento de
poblaciones y separado las flora. La “rotura” de barreras naturales
(comunicación Mar Rojo y Mediterráneo) o el “puenteo” de las mismas
(tráfico marítimo, cultivos marinos) ha provocado la introducción de
especies foráneas a gran distancia de sus áreas de distribución natural.


Regiones geográficas marinas


ALGAS BENTÓNICAS MARINAS INTRODUCIDAS EN GALICIA
Ochrophyta INVASORAS
Colpomenia peregrina uidas
d istrib cio nes
Sargassum muticum ente pobla
Undaria pinnatifida Am pliam andes a
gr nativ
Rhodophyta
Forman n la flora
a
Anotrichium furcellatum Alter
Antithamnionella spirographidis y A. ternifolia
Asparagopsis armata y “Falkenbergia rufolanosa”
Chrysymenia wrightii
Dasya sessilis
Gracilaria vermiculophylla
Grateloupia subpectinata
Grateloupia turuturu
Heterosiphonia japonica
Lomentaria hakodatensis
Neosiphonia harveyi
Chlorophyta
Codium fragile
Ulva pertusa


Sargassum muticum (Yendo) Fensholt


Sargassum muticum
Clasificación
División: Ochrophyta
Clase: Phaeophyceae
Orden: Fucales
Familia: Sargassaceae

Nombre común
Japonesa

Sinónimos
Sargassum kjellmanianum
Yendo f. muticum


Sargassum muticum


Sargassum muticum

Mecanismos de dispersión: pueden viajar a la deriva (hasta 3 meses) y liberar
plántulas en otras áreas. Alta capacidad de dispersión, mediante fragmentos
(viables reproductivamente) y vesículas de flotación que le permiten desplazarse
por las corrientes. En la costa oeste de Estados Unidos colonizó 2000 km en 20 años.
En las Islas Británicas se expandió rapidamente (30 km/año). En la Península Ibérica
se extendió rápidamente en 5 años, desde la costra vasca hasta Galicia.

Presenta simultáneamente características de especies oportunistas (rápido
crecimiento, alto potencial reproductivo, gran tolerancia a cambios en el medio y
gran capacidad de regeneración) y de especies estables (perenne, gran tamaño y
desarrollo de estructuras de reserva).

Gran tolerancia a cambios de salinidad y temperatura, sin embargo presenta baja
tolerancia a la desecación en ambientes intermareales, por lo que es más competitiva
en ambientes submareales.


Sargassum muticum
Reproducción: ciclo monogenético con autofecundación, por lo que una planta puede llegar
a producir un gran número de plántulas. Tiene un alta tasa de crecimiento y de fertilidad en
los receptáculos, los cuales se producen en primavera y verano. La fecundación se produce en
el exterior del receptáculo, pero los cigotos y nuevas plántulas pueden quedar adheridos a la
superficie del receptáculo durante 2-3 días (hasta el desarrollo de rizoides), de manera que
son liberados en fases más maduras. Además, un receptáculo puede producir hasta 324
cigotos.

Estados de resistencia (esporas, semillas): puede pasar la época invernal en fase de planta
adulta aletargada (10-15 cm), con gruesas y cortas ramas de las que emergen las ramas
erguidas en primavera. Se conocen 4 etapas en el ciclo de vida (crecimiento, reproducción,
senescencia y reposo). El período de crecimiento se produce entre febrero y mayo, el
reproductivo en verano, y va seguido de un período de senescencia en el que las plantas se
cubren de epífitos. En otoño comienza un período durmiente que se continua en invierno. Las
rama laterales mueren a finales de verano y otoño. Existen diferencias en la fenología
reproductiva entre diversas áreas geográficas. Por el tipo biológico de resistencia se denomina
hemifanerofícea y es frecuente en algas nativas del género Cystoseira.

Predadores: algunas plántulas son consumidas por moluscos y anfípodos, pero sin efecto
restrictivos de las poblaciones.


Sargassum muticum
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Sargassum muticum Receptáculos portando nuevos individuos

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Sargassum muticum
Hábitat
Sobre rocas y sustratos duros del intermareal inferior y submareal hasta 10 m.
Común en el fouling, colonizando sustratos artificiales duros en zonas de influencia
de actividades humanas. Aparece en zonas medias o externas de rías donde el
hidrodinamismo no es muy elevado. En zonas expuestas al oleaje, queda relagado a
charcas de marea, donde compite con Cystoseira humilis var. myriophylloides.
Tolera un amplio intervalo de condiciones ecológicas lo que favorece su carácter
invasivo. Además, la eutrofización y alteración del sustrato favorecen el crecimiento.
Crece a temperaturas 10-30ºC y salinidad 6-34 psu.


Sargassum muticum
Área nativa: costa de Japón y suerte de Asia.
Área de introducción: introducida accidentalmente en la costa Pacífica de
norteamérica (en la década de los 40) y en Europa a principio de los años 70.
Expansión en Europa: Encontrada por primera vez en las costas europeas en 1973
(Islas Británicas). Se extendió rápidamente por la costa europeas, Mar del Norte,
Bégica, Holanda, Dinamarca, Suecia, Francia, España, Portugal y Mediterráneo.
Península Ibérica (Atlántico): primera localización en la Península Ibérica en
1985. En Galicia se encontró por primera vez en 1986, en las rías de Ferrol, Muros,
Arousa y Pontevedra.
Tendencia: Expansión.


Sargassum muticum
Vía de introducción
Vector más importante por transporte de bivalvos. Probablemente introducida
con el comercio de ostras (Crassostrea gigas) desde la Columbia Británica o
Japón a Europa. Además, los estadíos microscópicos pueden ser transportados
en aguas de lastre o en los cascos de los barcos. La expansión desde Francia,
probablemente haya sido por causas naturales. La dispersión marginal
seguramente de ha producido mediante plantas a la deriva.

Impacto social y en la salud: Interfiere en el uso recreativo de la costa y causa
molestia cuando es arrojado por la marea y amontonado en la costa, debido a la
gran biomasa que produce y los procesos de putrefacción asociados.

Impacto económico: Debido a que prolifera sobre sustratos artificiales como
pantalanes, cascos de barcos, tubería, estructuras de acuicultura, ocasiona
gastos de limpieza, también obstrución hélices de pequeñas embarcaciones.
Causa molestia en campos ostrículas, obstruyendo redes, cubriendo el
sustrato. En Escocia causa daño en las granjas de salmón, mejillón y ostra.


Sargassum muticum
Impacto ecológico: desplazamiento de especies nativas por ensombrecimiento a
los estratos basales, causando descenso en abundancia y riqueza específica. Provoca
cambios en la estructura de las comunidades locales y en sus comunidades de
invertebrados. Documentado el desplazamiento a Saccharina latissima, Laminaria
digitata, Zostera marina y Halidrys siliqusa.
•Especie muy competitiva con una elevada productividad neta, mayor que especies
nativas como Cystoseira baccata o Saccorhiza polyschides.
•Puede modificar el hábitat donde se instala, el reducir la irradiancia de los
estratos inferiores, disponibilidad de espacio, aumentar la sedimentación y reducir
la concentración de nutrientes u oxígeno.
•Sargassum tiene un pequeño disco basal que ocupa un reducido espacio, por lo que
la competencia por el espacio no parece ser importante; sin embargo, los grandes
frondes ejercen una intensa competición por la luz y los nutrientes. Sin ambargo, los
efectos son más notorios cuando la densidad de plantas es elevada o en ambientes
submareales.
•El efecto sobre las comunidades nativas es bajo en las áreas poco invadidas (como
ambientes intermareales) mientras que es más notorio cuando S. muticum alcanza
grandes densidades y tamaño.


Sargassum muticum

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Sa
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mu
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Sargassum muticum
Cystoseira tamariscifolia

Sarg
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Sargassum muticum
Sargassum
muticum

Cy
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Sargassum muticum
Beneficios

Económicos: posible valor comercial para obtención de alginatos, sin embargo
no parece ser rentable. En Galicia se han realizado experiencias positivas para su
uso como material de adsorción para la eliminación de compuestos
contaminantes de origen industrial.

Ecológicos: soporta un gran número de organismos epífitos (animales y
vegetales) hasta 80 especies en algunos estudios y más que la especies locales,
debido a su estructura tridimensional. Proporciona nuevos hábitats para
organismos epibiontes, lo que puede atraer a depredadores. En Asturias,
encontraron que el alga endémica Bifurcaria bifurcata y especies epibiontes
oportunistas se ven beneficiadas indirectamente por la instalación Sargassum
muticum.


Sargassum muticum
Gestión, manejo y erradicación

Prevención: limpieza de barcos fuera del mar para evitar la dispersión del alga y
plantas arrojadas a la deriva deberán ser sacadas del mar.

•Preservar un buen estado de conservación de las comunidades naturales, ya
que alteraciones en ella favorecen la instalación de especies introducidas. La
ausencia de sustrato disponible limita su expansión. En Asturias, el dosel de
Bifurcaria bifurcata y Cystoseira sp. inhiben el reclutamiento de Sargassum
muticum (actuando como una barrera física).

•Control de vertidos de aguas de depuración de mariscos, porque son focos de
infección de nuevas plantas.

•Control de procesos de eutrofización de las rías ya que el enrequecimiento en
nutrientes favorece el crecimiento de Sargassum muticum.


Sargassum muticum


Química: tratamientos con herbicidas se han ensayado pero han sido
infructuosas debido a la ausencia de selectividad y a las grandes dosis que se
nececitan.
Inmersión de las ostras en salmuera es un método eficaz contra Sargassum
muticum pero no para Codium fragile.

Biológica: desconocida, aunque plántulas de Sargassum son consumidas por
moluscos y anfípodos, pero no parece tener efecto restrictivo en la especie
invasora.
En la Canadá el erizo (Strongylocentrotus droebachiensis) puede controlar la
abundancia de Sargassum; sin embargo otros autores indican que S.
droebachiensis no parece controlar la abundancia de plantas.


Sargassum muticum

Mecánica: eliminación manual (arranque, corte y succión) costosa y requiere
ser repetida para ser efectiva debido a que rebrota. Ha sido utilizada la
eliminación mediante; sin embargo, la erradicación en las Islas Británicas ha
sido fallida. No es factible desde el punto de vista logístico y económico, pero
se podría explorar la viabilidad de controlar las poblaciones en áreas concretas,
especiealmente las relacionadas con la política de conservación, donde las
especies alóctonas no son bien consideradas y provocan la pérdida de interés
de las zonas a conservar. Aplicándolo a Galicia, la erradicación se podría
restingir a zonas protegidas o de interés para la conservación marina.

Eliminación cuando la planta no está reproducida, con objeto de no facilitar
su dispersión. Es preferible en invierno, cuando la planta resiste en fase
vegetativa, antes de la emisión de nuevas ramas reproductoras. Hay que tener
especial cuidado en no arrancar especies nativas como Cystoseira baccata,
la cual tiene aerocistes similares a Sargassum muticum.


Sargassum muticum

c ata
ba
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Sar
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sei
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Cy


Sargassum muticum
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Undaria pinnatifida (Harvey) Suringar


Undaria pinnatifida
Clasificación
División: Ochrophyta
Clase: Phaeophyceae
Orden: Laminariales
Familia: Alariaceae
Sinónimos
Alaria pinnatifida Harvey
Nombre común
Wakame, kelp japonés


Undaria pinnatifida
Tres formas de la especie, dependiendo
de las condiciones ecológicas
(hidrodinamismo e iluminación) y
época del año.

•forma pinnatifida, estipe corto, nervio
medio ancho, divisiones de la lámina
largas y profundas y esporófilos
confluentes con la lámina.

•forma distans, estipe largo, nervio
medio estrecho, divisiones de la
lámiana cortas y poco profundas y
esporófilos situados en la base de la
planta.

•forma narutensis, caso extremo de la
forma pinnatifida, en el que es estipe es
muy corto y con esporófilos totalmente
confluentes con la lámina.


Undaria pinnatifida


Undaria pinnatifida
Reproducción: ciclo digenético heteromórfico anual, con esporófito muy aparente (2
metros) y gametófito microscópico. Gametófitos masculinos y femeninos
independientes. Gametófitos resistentes y longevos y pueden mantenerse en estado de
latencia más de un año y son estimulados por las variaciones estacionales de
temperatura e irradiancia.
•Se pueden producir hasta 1 millón de esporas gr-1 día-1 en tejido maduro, siendo el
90% viables los 5 primeros días. Las esporas tienen movilidad durante 5-6 horas.
•En el NE de Japón (4-25ºC) los esporófitos aparecen en invierno y desaparecen en
verano. El óptimo de crecimiento de esporófitos es a 20ºC, mientras que los
gametófitos miocroscópicos sobreviven entre -1 a 30ºC. Requerimientos de luz para
esporófitos muy amplia (120-500 µ E m-2 s-1 o menos) y los gametófitos son capaces
de sobrevivir más de 6 meses en oscuridad. Salinidad mínima para desarrollo de
esporófitos y gametófitos mayor de 27 psu. Fijación de las esporas mayor de 19 psu.
•En el Atlántico europeo los esporófitos son de mayor tamaño que los del
Mediterráneo (hasta 1 metro).
•Algunas poblaciones introducidas presentan más de una generación al año, como
sucede en Galicia. Especialmente en el submareal. En la Bretaña hay dos incrementos
de reclutamiento al año, uno en otoño y otro en primavera-verano.
•Propagación vegetativa por fragmentación, desconocida.


Undaria pinnatifida
o
o rófit
Esp

os
tófit
G ame

o
o rófit
Esp joven


Undaria pinnatifida
Estado senescente en verano


Undaria pinnatifida
Mecanismos de dispersión: gametófitos (microscópicos) pueden fijarse a
superficies flotantes (fouling) y desplazarse por las corrientes o ser
transportadas en los barcos, así como sobre las conchas moluscos y redes.
•La capacidad natural de dispersión es baja. En Nueva Zelanda, las plantas
no se separan mas de 10 metros de la generación anterior. En Argentina, en 2
años las plantas se habían separado 200 metros de la colonia inicial, a los 5
años 4,6 km y a los 7 año, únicamento 22 km. Sin embargo, los esporófitos
pueden viajar a la deriva y soltar esporas en otras áreas.

Estados de resistencia (esporas, semillas): gametófitos pueden mantenerse
latentes durante meses. En bajas condiciones de luz, son capaces de sobrevivir
condiciones adversas en estados de resistencia. Incluso comportarse como
heterótrofos.


Undaria pinnatifida
Predadores: varias especies atacan a Undaria, como copépodos, anfípodos,
erizos de mar y peces. Además, bacterias y ficomicetes atacan la planta. En
Galicia, el algas parda microscópica Laminariocolax aecidioides se ha
encontrado sobre algunas poblaciones. También se ha observado que peces
(salpas y bogas) han consumido Undaria de cultivos de mar.

Laminariocolax aecidioides


Undaria pinnatifida
Hábitat
Sobre rocas y sustratos duros del intermareal inferior y submareal hasta 15
metros), aunque en Galicia se ha encontrado a 25 metros de profundidad, en fondos
de cascajo y maërl. Puede aparecer sobre bibalvos, balánidos y ascidias. Abunda en
el fouling, colonizando sustratos artificiales duros en zonas de influencia de
actividades humanas. En zonas alteradas y portuarias convive con otras especies
alóctonas como Sargassum muticum o Grateloupia turuturu.

Zonas medias o externas de rías donde el hidrodinamismo no es extremo.

Convive con especies nativas como Laminaria spp. y Cystoseira spp, Himanthalia
elongata, Bifurcaria bifurcata, Corallina elongata. También se encuentra en
fondos submareales de maërl.


Undaria pinnatifida
Área nativa: Costa noroeste del Pacífico, Japón (excepto norte y este de
Hokkaido), Corea, Noreste de China y Sudeste de Rusia.
Área de introducción: Atlántico y Mediterráneo europeo. Argentina, Nueva
Zelanda, Australia, Tasmania, noroeste de Estados Unidos y México.
Expansión en Europa: primera localización en el Mediterráneo francés (Laguna
de Thau), desde dónde fue intencionadamente transferida a la Bretaña (1983) para
su cultivo. En 1987 se localizaron poblaciones naturalizadas en el atlántico francés.
El primer registro de las Islas Británica es de 1994 y en 1999 se encontró en
Bélgica, Holanda; siendo éstos los más septentrionales de Europa. En el
Mediteráneo también se encontró en la laguna de Venecia.
Península Ibérica (Atlántico): Se localizó por primera vez en la ría de Arousa en
1990. Se conoce en la costa asturiana desde 1995 y, actualmente, se localizó en el
norte de Portugal. En Galicia se expandió en la ría de Arousa entre 1988-1994,
mientras que en el período 1994-2000 se introdujo en las otras rías gallegas. Entre
2001 y la actualidad se asentó en las áreas conocidas y se detectó en las rías de
Bayona, Camariñás, Corme y Ferrol.
Tendencia: Expansión.


Undaria pinnatifida
Vector más importante por transporte de bivalvos, ya que fue introducida accidentalmente
desde Japón al Mediterráneo francés, por la importación de ostras. Debido a la importación
de Crassostrea gigas del Pacífico. Secundariamente, los cultivos marinos han fomentado su
expansión y han sido los responsables de la introducción intencionadamente en la Bretaña.
•Otro vector y vía de expansión es la navegación, ya que se puede fijar a los cascos de las
embarcaciones y aparejos de pesca. Los gametófitos pasan desapercibido en las superficies de
los barcos y pueden desarrollar nuevos esporófitos en zonas alejadas, llegando a resistir
períodos de más de 4 semanas en navegaciones transoceánicas. El trasiego de barcos, se
relaciona con la aparición en diversos puertos a lo largo de la costa, con diversos ejemplos en
Galicia, Asturias y Portugal. En las Islas Británicas su introducción fue provocada por las
travesías de barcos de recreo que viajaban desde la Bretaña. En Asturias probablemente se
ocasionó por el recalo de barcos franceses en puertos asturianos. Igualmente, el hallazgo en el
puerto de A Coruña está relacionado con el tráfico marítimo.
•Las artes de pesca ha sido otro vector denunciado como influyente en la dispersión de
Undaria.
•Otro mecanismo de dispersión son las plantas de arribazón que flotan libremente y que
pueden dispersar esporas a varios quilómetros de distancia. Los procesos de desecación que
sufren en las playas y la posterior hidratación en la marea alta, son un estímulo para la
liberación de esporas.


Undaria pinnatifida
Impacto ecológico: en algunas zonas geográficas es la especie dominante,
ocasionando descenso de abundancia de especies locales. Puede ocasionar
desplazamiento de especies nativas. En Galicia, debido a su fugaz desarrollo y
época de aparición no compite con las grandes algas pardas y se integra en los
“bosques” de Laminaria y Saccorhiza, sirviendo de sustrato para diversas especies
epífitas.
Es de lenta expansión, poco agresiva y ocupa nichos ecológicos vacíos. En la
Bretaña tampoco es una especie agresiva. Su comportamiento es de especie
oportunista con alta capacidad para colonizar rápidamente nuevos sustratos
alterados y estructuras artificiales. En la Bretaña, se demostró que las Laminariales
autóctonas compiten con Undaria pinnatifida en ambientes naturales.
Impacto social y en la salud: desconocido, aunque puede causar molestia cuando
es arrojada por la marea y amontonada en la costa.
Impacto económico: Prolifera sobre sustratos artificiales como pantalanes, cascos
de barcos y estructuras de acuicultura, ocasionando gastos de limpieza. En
Holanda crece principalmente sobre las ostras, por lo que dificulta las
recolecciones y ocasiona problemas al personal encargado.


Undaria pinnatifida

Beneficios

Económicos: es utilizada para consumo humano bajo el nombre de wakame.
Tiene gran importancia comercial y es cultivada para comida. Se ha cultivado
en la Bretaña y en Galicia. Actualmente, en Galicia las poblaciones
naturalizadas suministran la mayor parte del mercado.

Ecológicos: sirve de sustrato para especies epífitas de pequeño porte, como
hidrozoos, algas filamentosas y colonias de anfípodos. En Galicia, existen
diversas algas pardas y rojas filamentosas sobre la lámina de Undaria
pinnatifida.


Undaria pinnatifida

Prevención: Limpieza de cascos de barcos fuera del agua para evitar la dispersión
del alga (especialmente el gametófito microscópico). Plantas arrojadas a la deriva
deberán ser sacados del mar.
•No realizar experimentos científicos de campo en los sitios donde el alga no existe.
•No debería ser utilizada para exponer al público en acuarios. Incluso, si las plantas
son tratadas existe riesgo de que partes fértiles lleguen al mar.
•Preservar la conservación de comunidades naturales, ya que alteraciones en
ella favorecen la instalación de especies introducidas. En condiciones naturales
Undaria pinnatifida no es competitiva con las laminariales autóctonas.
•Cuidar las medidas de seguridad en los procesos de acuicultura y de cultivo de
mejillón, cuando se procede a la limpieza o desdoble de cuerdas, evitando que las
algas sean arrojadas al mar.
•Control de vertidos de aguas de depuración de mariscos, ya que son focos de
infección de nuevas plantas.


Undaria pinnatifida


Mecánica: factible con los esporófitos, debiendo recolectarse en su totalidad.
Muy problemática con la fase gametofítica porque es microscópica. En varias
ocaciones las erradicaciones han tenido limitada eficacia. No confundirla con
especies locales como Saccorhiza polyschides o Laminaria ochroleuca.
El tratamiento con agua caliente ha sido eficaz para matar esporas en aguas de
lastre.

Química: tratamientos con herbicidas y pinturas antifouling han sido eficaces
porque algunas toxinas evitan la germinación de esporas o causen mortalidad de
gametófitos.

Biológica: desconocida.


Undaria pinnatifida
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Undaria pinnatifida
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Saccorhiza pin
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Asparagopsis armata Harvey
“Falkenbergia rufolanosa” (Harvey) F. Schmitz


Asparagopsis armata Harvey
“Falkenbergia rufolanosa” (Harvey) F. Schmitz
Clasificación
División: Rhodophyta
Clase: Rhodophyceae
Orden: Bonnemaisoniales
Familia: Bonnemaisoniaceae

Comentario taxonómico: Se confunde con
Asparagopsis taxiformis, especie alóctona que se
distribuye en aguas tropicales y subtropicales, y que
se conoce en las Islas Canarias y en el Mediterráneo.
Ambas especies, se diferencian en que A. taxiformis
no tiene ramas espinosas, sin embargo la
diferenciación entre las dos especies de
Asparagopsis es problemática, sobre todo cuando se
trata de fase esporofítica.
•Se confunde con Bonnemaisonia hamifera, pero
ésta presenta ganchos y se diferencia
anatómicamente. En Galicia, sólo se conoce el
esporófito microscópico (fase Trailliella). ramas espinosas


Biología/Ecología

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Reproducción: Ciclo

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heteromórfico

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alternante entre una fase

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(Asparagopsis armata)

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rufolanosa), que pueden As Fa
vivir en el mismo lke
hábitat, pero a veces se nb
detectan únicamente erg
invasiones de una sola (es ia
fase del ciclo. po ru
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o) o sa


“Falkenbergia rufolanosa”



•Mecanismos de dispersión: Especie oportunista.

•Asparagopsis se engancha en material flotante y Falkenbergia se dispersa
por flotación.

•Alta capacidad de reproducción vegetativa. La temperarura restringe su
distribución. Asparagopsis armata sobrevive a temperaturas más bajas que A.
taxiformis.

Predadores: desconocidos. Producen compuestos halogenados que son
tóxicos para bacterias y hongos, actuando como agentes anti-herbívoros.

Estados de resistencia (esporas, semillas): viven a una temperatura 5-25ºC


Asparagopsis armata
Hábitat
Sustratos duros y arenosos en el intermareal inferior y submareal, junto a Saccorhiza
polyschides, Chondrus crispus, Gigartina pistillata.


“Falkenbergia rufolanosa”
Hábitat
Sustratos duros y arenosos en el intermareal inferior y submareal. Epifitan algas
como Corallina elongata, Bifurcaria bifurcata, Cystoseira baccata, Dictyota
dichotoma. La fase Falkenbergia es más común y coloniza hábitats variados.


Distribución
Área nativa: Oeste de Australia
Área de introducción: Ampliamente distribuida en el Atlántico Norte, hasta Senegal. Sureste
y suroeste de Asia. Norteamérica, sudamérica, Caribe, África, Australia y Nueva Zelanda.
Expansión en Europa: Primer registro data de 1923, en 1925 (golfo de Vizcaya), Francia
(1925) y similtáneamente en dos localidades del Mediterráneo. Posteriormente en Irlanda en
1941. Actualmente está establecida en toda Europa, Atlántico y Mediterráneo.
Gametófitos y tetrasporófitos descubiertos simultáneamente en cuatro localidades europeas,
por lo que se interpretó como cuatro introducciones independientes.

Península Ibérica (Atlántico):
Ampliamente extendida. Primer
registro de Tarifa (1930) y en
Galicia (Ría de Pontevedra) en
1933.
Tendencia: Estable, pero la
abundancia varía dependiendo de la
zona geográfica y de la temperatura.
En algunas zonas y épocas del año
produce “plagas”.



Introducida en Europa posiblemente asociada a ostras (primer registro en
Argelia 1923) y después extendido a toda la costa enganchada a objetos
flotantes, mediante sus ramas espinosas.

Impacto ecológico: desconocidos, aunque compite por los nutrientes y el
espacio con las especies nativas.

Impacto económico: desconocidos.

Beneficios económicos: desconocidos.

Gestión, manejo y erradicación mecánica: no usados.


Gracilaria vermiculophylla (Ohmi) Papenfuss
Clasificación
Clase: Rhodophyceae
Orden: Gracilariales
Familia: Gracilariaceae

Sinónimos
Gracilariopsis vermiculophylla Ohmi
Gracilaria asiatica Zhang & Xia


A Coruña Lugo Aveiro



Comentario taxonómico
Se confunde con Gracilaria gracilis, pero G. vermiculophylla es de
color pardo-rojizo o verdoso por decoloración, frente al rojo intenso de
G. gracilis. Además, G. vermiculophylla es muy irregular en
ramificación y las ramas son constreñidas en la base de inserción al
eje. Respecto al hábitat, G. vermiculophylla vive suelta sobre el fango
en zonas protegidas influidas por el agua dulce, mientras que G.
gracilis se fija a piedas o bivalvos y se desarrolla en zonas de salinidad
mayor.
También se confunde con Gracilaria bursa-pastoris y Gracilariopsis
longissima, pero requieren observaciones microscópicas.


Biología/Ecología
Mecanismos de dispersión: Las poblaciones francesas, probablemente se
introdujeron por cultivos marinos, mientras que las noruegas haya sido debida a
la navegación.
Reproducción: generalmente en estado vegetativo, siendo escasas las estructuras
reproductoras.
Predadores: El gasterópodo Littorina littorea tiene el potencial de controlar a G.
vermiculophylla, pero debido a que el pastoreo incrementa la tasa de
fragmentación, L. littorea puede llegar a facilitar más la dispersión de G.
vermiculophylla a pequeña escala.
Estados de resistencia (esporas, semillas): en estudios de laboratorio plantas de
Gracilaria vermiculophylla soportaron 3 semanas a baja salinidad (2 psu) y
oscuridad a 8º C, creciendo después de 5 meses.
Resiste a la desecación, enterramiento y pastoreo. También, soporta niveles
altos y bajos de luz y nutrientes. Además, tasa de decomposición es baja (9 días).
Esto explica su éxito en zonas intermareales protegidas y estuarios y su
comportamiento como tolerante al estrés.


Hábitat
•Localidades protegidas, estuarios, donde vive suelta sobre fango y arena. Se
desarrolla bien en lagunas someras turbias y estuarios.
•Aparece junto a especies nativas como Fucus vesiculosus y especies de
Chaetomorpha y Ulva. También sobre la fanerógama Zostera noltii.
•Ocasionalmente se puede encontrar en el submareal (2 metros).
•Cultivos experimentales confirman que vive en un amplio intervalo de temperatura
(11-25 ºC) y salinidad (10-30 psu), aunque el óptimo está a 19,5ºC y 10 psu.
•Favorecida por el enriquecimiento de nutrientes de prácticas agrícolas.

Galicia Bretaña


Distribución
Área nativa: Japón y Corea
Área de introducción: Atlántico europeo (Suecia, Noruega, Holanda,
España, Portugal), Atlántico oeste y Pacífico Este (Baja California).
Expansión en Europa: Conocida en la Bretaña desde 1996 y estudiada para
toda Europa (desde Noruega hasta el sur de Portugal). Encontrada en
Alemania en 2005. Península Ibérica (Atlántico): Primeros registros
confirmados en Galicia (2003) y sur de Portugal (2003), aunque
probablemente haya estado presente en Galicia desde 1989. En trabajos
previos de Galicia se comenta que en áreas de estuario aparecen fragmentos
de Gracilaria gracilis de vida libre, que constituyen acúmulos de 10-20 cm
de espesor y que cubren parcialmente las praderas de Zostera noltii.
Posteriormente, estas algas de vida libre en ambientes de marisma fueron
interpretados como Gracilaria bursa-pastoris.
Tendencia: Ampliamente establecida en varias regiones de Francia,
Dinamarca, Alemania y Suecia. Actualmente es una especie muy abundante
en Europa. Probablemente, extendida en varios estuarios de Galicia.


Probablemente por acciones
combinadas de importaciones
de ostras, aguas de lastre
desplazamiento en cascos de
barcos.
•A nivel local la dispersión
marginal secundaria,
seguramente se ha visto
favorecida por la alta
capacidad de fragmentación
que tienen las plantas, las
cuales se pueden transportadas
entre estuarios por las
embarcaciones, aparejos y
redes de pesca.


Bretaña

Impacto ecológico:
Competición con especies nativas, alteración de hábitats para cría
de peces e invertebrados, reducción de la penetración de la luz y
ahogamiento de marisco comercial.
•En algunas localidades de Norteamérica, Gracilaria vermiculopphylla
es la especie más abundante y llega a constituir hasta el 80% de la
biomasa total, por lo que tiene el potencial de alterar dramáticamente la
ecología de las bahías y aguas someras de Europa.


Bretaña


Gracilaria vermiculophylla A Coruña

Zostera noltii
Lugo

A Coruña Gracilaria vermiculophylla


Grateloupia turuturu Yamada
Clasificación
Clase: Rhodophyceae
Orden: Cryptonemiales
Familia: Halymeniaceae


Comentario taxonómico: Muy variable morfológicamente, desde láminas
lanceoladas con numerosas proliferaciones marginales, hasta láminas orbiculares
y sin proliferaciones.
•En toda Europa, ha sido confundida con Grateloupia doryphora hasta en 2002 se
demostró que la especie introducida en Europa era G. turuturu.
•También ha sido confundida con la especie autótona G. lanceola, la cual fue
descrita originalmente para el sur de la Península Ibérica y noroeste de África y de la
que existen poblaciones en Galicia y Málaga.
•Grateloupia lanceola es de color rojo púrpura, frecuentemente con motas más
pálidas en superficie y un color verde esmeralda en la base, mientras que G. turuturu
es de color rojo intenso o rosado, sin motas claras ni color verde esmeralda en su
base, además tiene un estipe más largo y suele presentar numerosas prolifereciones
por el margen. En 2006 se demostró molecularmente que G. lanceola era diferente
de G. turuturu y en 2007 se demostró (molecularmente y morfológicamente) que G.
lanceola, G. turuturu y G. doryphora son tres especies diferentes.
•Se puede confundir con Schizymenia dubyi, pero esta es más carnosa, no suele
presentar proliferaciones y es menos gelatinosa. También se puede confundir con
Calliblepharis ciliata, pero ésta es más rígida y presenta siempre proliferaciones
laminares. Además, ambas especies tienen una estructura diferente al microscopio.



Grateloupia lanceola



Grateloupia
lanceola


Mecanismos de dispersión: mediante liberación de gámetas y esporas. Fases
microscópicas y estadíos juveniles de gametófitos y esporófitos se pueden fijas a
conchas de mejillones y ostras.
Reproducción: Gametófitos y esporífitos de morfología similar y conviviendo en los
mismos hábitats.
Predadores: no conocidos.
Estados de resistencia (esporas, semillas): se considera que no sobrevive en aguas
muy frías. Rápido crecimiento en primavera y verano. Después, las láminas se
decoloran y degeneran y finalmente quedan las costras basales.


Hábitat
Sobre roca, mejillones o balánidos en el intermareal inferior y submareal (hasta 5
m), pudiendo ascender hasta charcas del intermareal medio con Lithophyllum
incrustans y Corallina elongata. Se ve favorecida en ambientes influenciados por la
arena, ya que esta ejerce un efecto abrasivo que deja sustrato disponible para ser
colonizado por G. turuturu.
•Prolifera en localidades eutrofizadas y tolera descensos de salinidad, creciendo
rápidamente con temperaturas altas.
•Coloniza ambientes semiexpuestos y protegidos, donde puede crecer hasta 1 metro y
es frecuente en localidades próximas a instalaciones de acuicultura. En estos
ambiente aparece junto con especies alóctonas como Sargassum muticum y Undaria
pinnatifida. Además suele presentar como epífita Neosiphonia harveyi (alóctona).
•Se ha encontrado en zonas portuarias.


Área nativa: Pacífico
Área de introducción: costa
atlántica y mediterránea europea
y norte de América. Rusia.
Australia y Nueva Zelanda.
Expansión en Europa: La
primera recolección se realizó
en el sur de Inglaterra (Solent)
en 1969, siendo identificada
como Grateloupia doryphora.
Posteriormente se aportaron nuevos registros para Europa.
En 2002 se demostró que la especie introducida en Europa se correspondía en realidad
con Grateloupia turuturu, tal ya se había anticipado para el Mediterráneo.
Península Ibérica (Atlántico): En Galicia, se conoce desde 1991 y en el norte de
Portugal desde 1997.
En Málaga, fue citada como Grateloupia doryphora , pero el estudio de material de
herbario demostró que correspondía a la especie autóctona G. lanceola.
Tendencia: en expansión zonas de reciente introducción como Portugal y norte de
Galicia.


En Europa, probablemente asociado con el cultivo de ostras, por lo que aparece
asociada inicialmente a zonas de cultivos marinos. En la costa americana, su
introducción se relaciona con la presencia de esporas en aguas de lastre.
En las zonas introducidas se ha expandido por dispersión marginal de manera
natural, probablemente por movimiento de plantas a la deriva.

Impacto ecológico: no bien estudiado, pero la densidad de plantas que colonizan
las charcas intermareales, hacen que sea una amenaza para las especies nativas por
efecto de sombra y competencia por los nutrientes.

Beneficios económicos: algunas especies del género se han utilizado par
aproducción de carragen.

Gestión, manejo y erradicación desconocidos


Galicia


Portugal


Heterosiphonia japonica Yendo
Clasificación
Clase: Rhodophyceae
Orden: Ceramiales
Familia: Dasyaceae

Sinónimos
Heterosiphonia assymetrica Hollenberg


•Durante varios años fue identificada en
Europa como Dasysiphonia sp. debido a la
similitud morfológica con las especies del
género Dasysiphonia.
•Se puede confundir con la especie
autóctona Heterosiphonia plumosa, pero
ésta es más aplanada en apariencia y tiene
9-12 células pericentrales en sección
transversal, frente a las 4 células
pericentrales que tiene H. japonica.
•Se puede confundir en apariencia con
otras especies de aspecto filiforme como
Daya sessilis (5 células pericentrales),
Brogniartella byssoides (5-7 células
pericentrales) o Bonnemaisonia
asparagoides (sin células pericentrales)
pero se diferencian atendiendo a caracteres
microscópicos. Heterosiphonia plumosa



Brogniartella byssoides
Dasya
sessilis

Bonnemaisonia asparagoides


Mecanismos de dispersión: rápida por propagación vegetativa,
enganchada a aparejos o en aguas de lastre. Esto explicaría su rápida
extensión a lo largo de la costa europea en 10 años.
Con fotoperíodo largo y temperatura (12-20ºC) las ramas pseudolaterales
desarrollan rizoides y se fijan al sustrato, a 4ºC y día corto la tasa de
supervivencia fue elevada, pero el desarrollo fue bajo y pocos fragmentos
desarrollaron rizoides y se fijaron al sustrato. A 0ºC solo unos pocos
pseudolaterales sobrevivieron tres semanas.
Las continuidad de las poblaciones depende de un alto grado de
reclutamiento. La continuidad de reproducción por fragmentación
durante todo el año facilita el asentamiento de las poblaciones en el
ambiente natural, después del invierno y cuando gran parte del sustrato ha
quedado descubierto.


Reproducción: muestra una efectiva propagación vegetativa por
fragmentación, por lo que se extiende rápidamente.
Se conocen plantas productoras de esporas, pero son raros los
gametófitos. En Europa, hasta 2005 todas las poblaciones europeas eran
estériles o presentaban esporas, pero no se conocían estructuras sexuales.
Recientemente se han encontrado gametófitos y estructuras sexuales en
Holanda y Galicia, pero en muy pocos individuos.
Corea la reproducción sexual sólo se ha observado en el sur donde las
medias de temperatura en invierno (14-18ºC) y verano (18-25ºC) son
ligeramente superiores a las del norte de Corea.
Estados de resistencia (esporas, semillas): Gran capacidad de
resistencia en estado latente. Fragmentos almacenados 40 días en
oscuridad a diferentes temperaturas (incluyendo temperaturas bajas de
15ºC correspondientes a las aguas de lastre) han sobrevivido y
regenerado bajo condiciones de cultivo.


Hábitat
•Coloniza fondos submareales (2-20 metros de profundidad, incluso hasta 40 metros)
sobre sustratos duros como rocas u organismos bentónicos duros como mejillones y
balánidos. Puede aparecer epífita de otras algas como Corallina elongata, Cystoseira
usneoides y C. tamariscifolia.
•Prefiere localidades semiexpuestas o protegidas, como zonas portuarias.
•Tolera variaciones de temperatura desde 0-30 ºC, pero requiere salinidades
relativamente altas. Condiciones óptimas son 19-25ºC y salinidad 30 psu, siendo
inhibido el desarrollo a salinidades inferiores a 20 psu y es incapaz de sobrevivir a
menos de 10 psu.



Distribución

Área nativa: Japón y Corea.
Área de introducción: Costa europea. Norteamérica, California. Rusia.
Expansión en Europa: Se localizó en Holanda (1994) en un un banco ostrero
abandonado, extendiendose rápidamente a la costa danesa. En 1996 se localizó en una
granja de ostras francesa (Atlántico) y en 1998 se localizó en el Mediterráneo francés.
En Noruega se encontró en 1996, llegando a ser un alga alóctona muy abundante en
ese país. En Dinamarca se localizó en 2005. Se conoce también en Escocia y el sur de
Inglaterra (2006). En Europa, se extendió rápidamente en 10 años.
También se conoce en Norteamérica (Alaska y California), Rusia y China.
Península Ibérica (Atlántico): Las primeras plantas se encontraron 1994 en varias
rías de Galicia, pero en un estudio retrospectivo de material de herbario se demostró
que los primeros registros de Heteroisiphonia japonica para Europa corresponden a
1988 y proceden de la ría de Ferrol.
Tendencia: expansión.


Vía de introducción: Mediante
acuicultura (importación de ostras para
cultivo) y navegación (aguas de lastre). Noruega
•Fragmentación de plantas y
desprendimiento de ramas laterales
monosifonadas, pueden ser un mecanismo
de dispersión marginal que sirve para
extender la invasión a otras áreas.
•Fragmentos almacenados 40 días en
oscuridad a diferentes temperaturas
(incluyendo temperaturas bajas de 15ºC
correspondientes a las aguas de lastre) han
sobrevivido y regenerado bajo condiciones
de cultivo.

Impacto ecológico: crece rápidamente y
se extiende sobre amplias áreas, fijándose
sobre algas y animales, por lo que puede
desplazar a las especies nativas.


Codium fragile
Clasificación
División: Chlorophyta
Clase: Bryopsidaceae
Orden: Bryopsidales
Familia: Codiaceae

Sinónimos
•Codium fragile
(Suringar) Hariot subsp.
tomentosoides (van Goor)
P.C. Silva

•Codium mucronatum var.
tomentosoides van Goor


Codium fragile


Codium fragile
Se reconocen seis subespecies de Codium fragile, de las cuales tres se consideran
“malas hierbas” en diversas partes del mundo (Silva 1955, Goff et al. 1992,
Trowbridge 1998).

•Codium fragile (Suringar) Hariot subsp. atlanticum (Cotton) P.C. Silva se conoce
en el Cantábrico. Esta subespecie se caracteriza por presentar un mucrón más
corto.

•Por su morfología, se puede confundir con Codium tomentosum o C. vermilara.
Pero se diferencian en la ausencia de mucrón microcópico. Sin embargo, hay que
tener cuidado con Codium tomentosum var. mucronatum, porque presenta algunos
utrículos con pseudomucrón. La diferenciación debe realizarse al microscopio o
utilizando una pequeña lupa de campo.


Codium fragile

r.
va
um
tos
en um
om tos
t m en
um atu
di on tom
o r
C uc um
odi
m C


Codium fragile
Biología/Ecología

Mecanismos de dispersión: transporte de fragmentos o plantas enteras que se dispersan por
flotación.
Reproducción: oportunista con alta tasa de crecimiento en condiciones favorables.
Aunque se reproduce sexualmente, presenta propagación vegetativa y reproducción
partenogenética y bajos niveles de variación genética.
Máxima abundancia en verano. Período reproductivo verano-invierno, con un máximo en
otoño. No se solapa en el tiempo con Codium tomentosum, fenómeno general con especies
que comparten el mismo recurso, como sucede con el sustrato. Se ve favorecida los años con
temperaturas cálidas.
Predadores: Ascoglossan nudibranchs en Norteamérica y Nueva zelanda. Littorina littorea
fue ocasioalmente observado sobre Codium en Nueva Scocia. Placina dendricta
(nudibranquio) observada en Nueva Scocia. Strongylocentrotus droabachiensis (erizo de
mar) potencial consumidor de Codium. Golfo de Maine algún gasterópodo consume algas
filamentosas y diatomeas asociadas a Codium, pero no a éste. La ausencia de predadores en
algunas zonas, probablemente haya contribuido a su expansión.
Estados de resistencia (esporas, semillas): desconocidos. La temperatura probablemente
es un factor limitante para la expansión.


Codium fragile
Hábitat
•Sustratos rocosos del intermareal inferior y submareal de localidades
semiexpuestas y protegidas del oleaje. Frecuente en zonas portuarias y de
cultivos marinos, sobre diques, muelles, embarcaderos, pantalanes y cabos. Puede
convivir con las especie autócona Codium tomentosum.
•Puede vivir en charcas intermareales de ambientes semiexpuestos o expuestos al
oleaje, lo que refleja la adaptabilidad del alga y su potencial poder de expansión en
ambientes más batidos en los cuales el oleaje favorece la fragmentación y su
capacidad de dispersión vegetativa.
•Elevada tolerancia fisiológica y plasticidad morfológica y fundional. Siendo
capaz de utilizar varias fuentes de nitrógeno en aguas oligotróficas y eutróficas.
Aunque es considerada una especie de aguas templado-cálidas (óptimo a 24 ºC) la
reproducción es posible a 12 ºC y los adultos pueden sobrevivir temperaturas
invernales de -2ºC.
•Ha sido descrita como especie invasora en estuarios y lagunas someras turbias, sin
embargo se ha demostrado que es sensible al enterramiento, pastoreo y desecación.
Además, tiene alta pérdida de biomasa bajo condiciones de estres y se descompone
más rápidamente que las especies nativas.


Codium fragile
Distribución
Área nativa: Japón y norte del Océano Pacífico.
Área de introducción: Océano Atlántico: Norte
América (Nova Scocia al Norte de Carolina),
Europa (Noruega, Suecia, Dinamarca, Holanda,
Islas Británicas, Francia, Península Ibérica),
Azores, Canarias. Mediterráneo (Penísula Ibérica,
Francia, Italia, Marruecos, Argelia, Túnez, Grecia,
Turquía). Océano Pacífico: California, Chile, sur
de Autralia, Nueva Zelanda.
Expansión en Europa: localizada originalmente en Holanda (1900). En 1919 se encontró en
Dinamarca, en 1930 en Alemania, 1933 Suecia, 1939 sur de Inglaterra, 1941 Irlanda, 1946
Noruega y costa Mediterránea en la década de los 50. Posteriormente se encontró en España
(1966), Italia (1974), España (1984), Túnez (1988), Argelia (1990), Turquía (1993), Slovenia
(1995) y Marruecos (2001).
Península Ibérica (Atlántico): abundante en Galicia, pero todavía no localizada en Portugal.
En España se localizó por primera por en 1966, mientras que en Galicia los primeros registros
datan de 1986, procedentes de las rías de Ferrol, Coruña, Arousa y Pontevedra. Posteriormente,
se recolectó en la ría de Muros, litoral de Lugo y actualmente se conoce en varias rías de
Galicia, como Vigo, Aldán y Viveiro. Abundante en Asturias.


Codium fragile
•Vector desconocido en Europa, aunque probablemente por transporte de ostras.
Dispersión secundaria debida a movimiento de marisco para acuicultura, transporte
en cascos de barcos o fouling en redes.
•Estudios moleculares demuestran que las poblaciones mediterráneas y del
Atlántico Noreste se originaron por introduciones independientes, directamente
desde su zona de origen.


Codium fragile

Impacto ecológico: altera las comunidades bentónicas y hábitats. Favorece la
sedimentación y dificulta el movimiento de invertebrados y peces en el fondo y
pudiendo variar la dinámica sedimentaria del litoral.
•Oportunista que compite por los nutrientes con otras especies indígenas como
Codium tomentosum. Es la única subespecies que se le reconoce carácter invasivo.
•En las Islas Británicas C. tomentosum ha visto disminuída su abundancia mientras
que C. fragile se ha expandido mucho, incluso en áreas donde no crecía C.
tomentosum. Esta alta competitividad y "agresividad" de las especies introducidas
parecen ser una característica general de muchas especies introducidas. Sin
embargo se ha verifcado que C. tomentosum reaparece en ambientes en los que
inicialmente se había instalado la especie alóctona.
•En el Golfo de Maine se ha convertido recientemente en una especie dominante
en comunidades bentónicas en áreas naturales de bosques de kelp que habían sido
sobrexplotadas por erizos. La existencia de nichos vacantes por sobrexplotación
pesquera o en comunidades alteradas puede facilitar la expansión de esta especie
alóctona.


Codium fragile

Especie dominante en algunos hábitats


Codium fragile

Impacto ecológico:
•En un estudio sobre las poblaciones de Codium fragile en Corea, se encontró
que la especie se hace dominante cuando las poblaciones naturales de
Sargassum y Ecklonia habían sido explotadas por el hombre, mientras que C.
fragile tiene un papel subordinado en comunidades diversas y bien
conservadas procedentes de áreas marinas protegidas.
•En Nova Scocia, se demostró que el crecimiento de Codium fragile en
poblaciones naturales de bosques de kelp es limitado por la diversad de especies
de Laminaria y Desmarestia. Sin embargo, cuando el dosel erguido es destruido
C. fragile se hace dominante y dificulta la recolonización del kelp.
Permaneciendo la especie invasiva por períodos prolongados.


Codium fragile

Puede ocupar el
hábiat de
Codium tomentosum


Codium fragile
Impacto social y en la salud: causa molestia cuando es arrojado y amontonado en la costa
junto con piedras y se pudre.
Impacto económico: ensucia redes de pesca, muelles y embarcaderos, así como lechos de
marisco, obstruyendo los dragados de vieira e interfiere en las cosechas. Puede tener
incidencia negativa sobre poblaciones de pectínidos por reducción del reclutamiento y del
crecimiento y aumento de la vulnerabilidad a la depredación.
Antiguamente, impacto directo por pérdida de “semilla”. Codium fragile y Colpomenia
peregrina se denominaban "ladrones de ostras", ya que al fijarse sobre ellas, las desplazaban
por flotación.

Beneficios
Económicos: utilizada como alimento en países asiáticos.
Ecológicos: Sirve de sustrato para especies (animales y vegetales) epífitas. En Galicia son
frecuentes las algas rojas filamentosas sobre de Codium fragile. En Nova Escocia, se
encontró que no había diferencias entre las algas y animales epífitos sobre los talos (parte
media y basal) de Codium y Laminaria. De esta manera Codium es utilizado de soporte para
numerosos organismos epífitos, al igual que las especies locales.


Codium fragile

Algas y animales epibiontes sobre Codium fragile


Codium fragile


•Prevención: medidas de cuarentena y educación social para anticipar su
expansión. Preservar la conservación de comunidades naturales, las cuales
dificultan el asentamiento de especies alóctonas. Ha quedado desmostrado que
alteraciones de las comunidades naturales favorecen la instalación de
especies introducidas. Comunidades con alta riqueza específica son más
resistentes frente a invasiones de especies alóctonas. En poblaciones naturales y
de mar abierto en Galicia, C. fragile no parece competir con C. tomentosum. En
Asturias y Cantábrico, C. fragile no desplaza o elimina a C. tomentosum.
•Necesarias investigaciones sobre el comportamiento de las especies en sus
lugares de origen que sirvan para entender la biología de la especie y la dinámica
poblacional. Este tipo de trabajos sirve para anticipar acontecimientos sobre la
expansión de especies introducidas.
Mecánica: poco efectiva debido a que se reproduce por fragmentos.
Química y biológica: desconocidas.


Resumen y conclusiones

•Factores responsables de la introducción de especies

•Vías migratorias

•Efectos de las especies alóctonas

•Éxito de las especies alóctonas

•Red de alerta para algas marinas alóctonas


Factores responsables de la introducción de especies

Navegación (tráfico marítimo y las actividades en mar abierto) que
asegura el transporte (casco embarcaciones, aguas de lastre, fondeos,
estructuras remolcadas).

Maricultura comercial (importación ostras y bivalbos que llevan
inóculos de algas).

Cultivos experimentales y acuarios (invasión de Caulerpa taxifolia
en el Mediterráneo).

Material de acondicionamiento y transporte (introduccion de Fucus
spiralis en el Mediterráneo, junto con cebo para la pesca.

Eliminación barreras geográficas (Mediterráneo el 10% de las
especies levantinas han migrado a través del Canal de Suez.


Vías migratorias

La principal fuente de algas alóctonas en Europa es la costa asiática
y pacífica de norteamérica.

El movimiento de especies indígenas no es un proceso
unidireccional, ya que se han introducido especies del Atlántico al
Pacífico, como el cirrípedo Balanus amphitrite y el alga roja
Schottera nicaensis.

En Nueva Zelanda se han introducido numerosas especies
procedentes del Atlántico

En el Mediterráneo se han introducido un centenar de especies
procedentes del Mar Rojo vía Canal de Suez (sin exclusa y con
dominio de corriente sur-norte).


Efectos de las especies alóctonas

Neutros: aumento de la diversidad

Negativos:
•Homogeneidad florística y empobrecimiento florístico (selección
especies resistentes)
•Competencia con flora autóctona
•Ocupación sustrato
•Consumo de nutrientes
•Cambios locales oceanográficos y sedimentológicos
•Económicos y sociales
•Obras, navegación y turismo (invasión, obstrucción, deterioro
material, paisaje)
•Pesca y acuicultura (producción, manejo cultivos, toxicidad)

Positivos:
Explotación nuevo recurso (Undaria pinnatifida)
Disponibilidad de nuevos sustratos para epibiontes

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